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新聞資訊(xun)

PCR(聚合酶鏈式反應)幾(ji)乎(hu)是分子實驗室里最常見(jian)的技術之一(yi)。但有時(shi)候(hou),做著做著,條帶(dai)(dai)就是不上鏡:要(yao)么(me)(me)無條帶(dai)(dai),要(yao)么(me)(me)全是拖尾(wei),要(yao)么(me)(me)陰(yin)性對照還神奇地亮了……??

別急!今(jin)天我(wo)們就來(lai)盤點 PCR失敗的5個常(chang)見原因,并提供實用(yong)的解決辦法,幫你少踩坑。

1???模板DNA質量或(huo)濃度不合(he)適(shi)

?? 表現:無條(tiao)帶、條(tiao)帶過弱或拖尾(wei)。

? ???

?? 原因:DNA降解(jie)、雜(za)質殘留,或者濃度過低/過高。

? 解決辦法:

  • 保證DNA純度(A260/A280 = 1.8–2.0);
  • 稀釋過濃模板;
  • 植物/土壤等樣本建議用高純度提取試劑盒。

2???引物設計或濃度有問題

???表現:非特異性條帶、引物二聚體。

???原因:引物設計不合理,濃度過高/過低。
??解決辦法

  • 長度(du)18–25 bp,GC含量40–60%;

  • 避免3’端互補;

  • 終濃度(du)一般0.1–0.5 μM,必(bi)要時做梯(ti)度(du)PCR優化。

3???PCR體系或酶活性問題

???表現:完全無擴增或擴增效率低。

???原因:Taq酶失活、Mg2?濃度不合適、dNTP降解。
??解決辦法

  • 分裝(zhuang)保(bao)存酶,避免(mian)反復凍融;

  • 優化Mg2?濃(nong)度(1.5–2.5 mM);

  • 用新鮮dNTP;

  • 推薦選擇性能優異的PCR預混液??? 預混(hun)液中已(yi)優化了緩沖體系和酶活性,能顯著提升擴(kuo)增成功率,減少反復調試的時間(jian),非常適合常規科研實驗。

4???實驗操作污染

???表現:陰性對照(zhao)也出現條帶(dai)。

???原因:PCR產物殘留、移液槍污染、空氣中DNA污染。
??解決辦法

  • 嚴格分(fen)區(qu)操作(提取(qu)區(qu)/體系配(pei)置區(qu)/產物分(fen)析區(qu)分(fen)開);

  • 用帶濾芯的槍頭;

  • 定期(qi)清潔實驗臺(tai),使用核(he)酸(suan)去(qu)除劑。

5???循環條件設置不當

???表現:條帶模糊、非特異性擴增或無結果。

???原因:退火溫度過低/過高、延伸時間不足、循環數過多。
??解決辦法

  • 根據引(yin)物Tm值設置退火溫度;

  • 延伸時(shi)間約 1 kb/min;

  • 循環(huan)數控制在30–35次。

???總結

PCR失敗并不可怕,常見問題主要集中在?模板、引物、體系、操作和循環條件?這五個方面。逐(zhu)一排(pai)查,總能找(zhao)到原因。

而對于高校實驗室或科研人員來說,選擇一款高性能PCR預混液,往(wang)往(wang)能讓PCR事半功(gong)倍,節省(sheng)大量試錯時間。

?? 科(ke)研路上,少一(yi)點彎路,多一(yi)點高效!

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GDSBIO #P2121?SYBR? Green Blue qPCR Mix (Universal ROX+)?與知名品牌A/B/C/D/E同類產品的qPCR熔解曲線對比

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